Le compteur d'algues est un outil essentiel dans les domaines de la surveillance écologique des plans d'eau, de l'évaluation environnementale et de l'aquaculture, où la régularité de son fonctionnement influe directement sur la précision et la fiabilité des données. Les détails d'utilisation sont détaillés ci - dessous à partir des quatre principaux liens de la préparation des échantillons, de la mise en service des instruments, du comptage des observations et du traitement des résultats.

I. prélèvement d'échantillons et prétraitement: jeter les bases des données

Les échantillons doivent être représentatifs et doivent être prélevés en évitant les matières flottantes de surface et les sédiments de fond, en utilisant une méthode d'échantillonnage en couches verticales (p. ex. couche superficielle, couche intermédiaire, couche inférieure) pour un mélange homogène. Pour l'analyse quantitative, le volume d'échantillonnage (par exemple, 1 L) doit être enregistré de manière synchrone. Pour les échantillons d'eau contenant plus de particules en suspension, les grandes impuretés doivent être éliminées par préfiltration sur membrane filtrante à pores de 30 à 50 μm, mais il faut veiller à éviter la perte d'algues cibles par filtration excessive. Pour distinguer les algues vivantes des algues mortes, vous pouvez ajouter une concentration finale de 0,1% de colorant rouge neutre et les cellules vivantes seront colorées en rouge. La durée de conservation de l'échantillon ne doit pas dépasser 24 heures et la conservation à basse température (4 ° c) à l'abri de la lumière peut ralentir les changements morphologiques des algues.

II. Mise en service de l'instrument: correspondance précise des conditions d'observation

Allumez et Préchauffez pendant 10 - 15 minutes pour vous assurer que la source lumineuse est stable. Sélectionnez le pool de comptage approprié (p. ex., le cadre de comptage du phytoplancton) en fonction de la densité des algues, et les échantillons à haute abondance doivent être dilués à un nombre de cellules ≤ 100 / champ visuel. Ajustez le multiple de l'objectif (couramment utilisé 10 × ou 40 ×) pour obtenir une mise au point nette de l'image de la cellule avec un bouton de mise au point grossier / fin. Régler l'intensité lumineuse appropriée - certaines algues (comme les cyanobactéries) sont sensibles à la lumière intense, la réduction de la luminosité de la source lumineuse empêche les changements morphologiques causés par les dommages causés par la lumière; Les groupes de structure texturée tels que les diatomées ont besoin d'une lumière fortement transmise pour mettre en évidence les caractéristiques de la surface de la coquille. Si l'instrument est équipé d'une fonction de balayage automatique, vous devez calibrer la vitesse de balayage et la résolution de l'image à l'avance pour éviter les compteurs manquants ou les doubles comptages.

Iii. Observation et comptage: Opération normalisée pour éviter les écarts

Utilisez le chemin de Glyphe "ß" pour parcourir toute la salle de comptage et éviter d'omettre les zones de bord. Les cellules superposées doivent être séparées en régulant la distance focale à une seule couche après comptage, si elles ne peuvent pas être distinguées, elles sont calculées par demi - individu. Pour les populations en chaîne (p. ex. microcystia) ou les populations de gomme (p. ex. fibrilla), un dénombrement global est nécessaire et la taille de la population est enregistrée. Lorsque vous rencontrez des espèces difficiles à identifier, vous pouvez prendre des alignements de rétention microscopiques. Il est recommandé de compter au moins 2 échantillons parallèles par échantillon, en prenant une moyenne pour réduire l'erreur aléatoire. Si le coefficient de variation d'un seul comptage est supérieur à 15%, il faut augmenter le nombre de répétitions à plus de 5.

Iv. Calcul des résultats et contrôle de la qualité

Les données brutes ont été calculées à partir de la formule "densité cellulaire = valeur de comptage × multiple de dilution / volume d'échantillonnage". Une attention particulière doit être accordée à la conversion des unités (par exemple, cellules / l). Mettre en place un système de contrôle de la qualité: ① contrôle à blanc (eau stérile) pour vérifier la contamination des réactifs; ② exactitude de la méthode de vérification expérimentale de récupération Additive; ③ la zone de champ de vision de comptage est régulièrement calibrée avec une solution de particules standard. Les enregistrements de données doivent contenir des paramètres environnementaux tels que le moment de l'échantillonnage, le lieu, la température de l'eau, le pH, etc., afin de faciliter l'analyse de corrélation ultérieure.

V. Entretien et maintenance: prolonger la durée de vie de l'équipement

Nettoyez les résidus du bassin de comptage à temps après chaque utilisation, rincez - les d'abord avec de l'eau distillée et désinfectez - les par immersion dans de l'éthanol à 75%. Les lentilles d'objectif ne peuvent être essuyées unidirectionnellement qu'en trempant une petite quantité de mélange d'alcool dans du papier essuie - glace. Le cordon d'alimentation doit être retiré lorsqu'il n'est pas utilisé pendant une longue période, le capot anti - poussière sur le capot est stocké dans un environnement sec. Vérifiez régulièrement la durée de vie de l'ampoule de la source lumineuse et remplacez - la à temps pour garantir une intensité lumineuse stable. Les composants électroniques évitent le contact avec des liquides corrosifs et doivent être réparés par un professionnel en cas de défaillance.