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Bâtiment 2, parc de haute technologie de Songjiang, zone de développement de luhen Jing, 518, route de la brique d'argon, district de Songjiang, Shanghai
Shanghai yanzun biotechnologie Co., Ltd
Bâtiment 2, parc de haute technologie de Songjiang, zone de développement de luhen Jing, 518, route de la brique d'argon, district de Songjiang, Shanghai
Nom du produit:HEC - 1 - B cellules humaines d'adénocarcinome endométrial
Marque: Shanghai Shenzhen Bio
Nombre de cellules: 1x10 ^ 6 cellules
Viabilité cellulaire: 95% (viability par Trypan Blue exclusion)
Passage cellulaire: 1: 4 ~ 1: 6 passage; Changement de liquide 2 ~ 3 fois par semaine
Conditions de croissance: phase gazeuse: air, 95%; CO2, 5%; Température: 37℃
Tests cellulaires: les cellules ne contiennent pas de VIH - 1, de VHB, de VHC, de mycoplasmes, de bactéries, de levures et de champignons
Conditions de culture: dmem (haute teneur en sucre) + 10% FBS + 1% P / s; 37°c, 5% de CO2
Méthode de passage: 1: 2 - 1: 3 changement de liquide une fois en deux jours recommandé
Conditions de lyophilisation: lyophilisat cellulaire sans sérum
Condition de congélation: 90% FBS + 10% DMSO
Lyophilisation cellulaire: lyophilisation de l'azote liquide
Méthodes de génération |
Sous - Recommandation 1: 2 générations |
Conditions de congélation |
Gel sans sérum |
Description des cellules |
Les cellules HEC - 1 - B sont une sous - souche de cellules HEC - 1 - a isolée par H. kuramoto en 1968. Contrairement à HEC - a - 1: Cette sous - souche présente un cycle de croissance stable entre le 135ème et le 190ème jour de culture et une récurrence aplatie, plus pavée que la lignée parentale. De plus, le Groupe chromosomique principal est deux fois plus grand que celui des cellules parentales. Les cellules de cette banque ne sont utilisées que pour des travaux scientifiques et ne peuvent pas être utilisées à d'autres fins sans autorisation, et les utilisateurs ne peuvent pas transférer les cellules de cette banque à des tiers. |
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Notes de culture |
Recueillir le milieu en bouteille avec un tube de centrifugation stérile, laisser comme culture de transition |
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Cellules au post - traitement
Le remplissage du liquide de culture et la fermeture de l'embouchure de la bouteille après que les cellules aient été cultivées en bon état dans un flacon de culture est la méthode de transport cellulaire. Après avoir reçu les cellules de retour à leur propre laboratoire, ouvrez d'abord l'emballage extérieur, utilisez75% d'alcool pulvérisé toute la bouteille après désinfection à l'intérieur de la table ultra - propre, opération strictement stérile, incubateur de repos2 - 4 heures. observation sous miroir: pas dépasséÀ 80% de confluence, le liquide de culture peut être mis en bouteilleRecueillir dans le tube de centrifugation, ajouter6 ml de milieu, mettre37°c, incubation en incubateur à 5% de CO2; Au - delà de 80% de confluence, en fonction du passage ou de la congélation, voir les étapes de culture cellulaire pour les opérations spécifiques.(Notez que l'expédition est scellée bouteille de culture, mettre dans l'incubateur pour cultiver Rappelez - vous que le couvercle de la bouteille de culture est dévissé, après le passage recommande une bouteille avec le milieu de culture dans la bouteille d'origine, une autre bouteille avec son propre milieu de culture) et
HEC - 1 - B cellules humaines d'adénocarcinome endométrialÉtapes de culture
Un,Cellules de réanimation: contiendraUn lyophilisateur de 1 ml de suspension cellulaire est décongelé rapidement sous agitation dans un bain - Marie à 37°c, 5 ml de milieu de culture sont ajoutés pour bien mélanger. Centrifuger à 1000 RPM pendant 5 minutes, éliminer le surnageant, compléterBien souffler après 4 - 6 ml de milieu. Toutes les suspensions cellulaires sont ensuite ajoutées à la culture dans le flacon de culture pendant la nuit (ou la suspension cellulaire est ajoutée)Dans un plat de 6cm), cultivé pendant la nuit. Changez de liquide le lendemain et vérifiez la densité cellulaire.
Deux,Passage cellulaire: si la densité cellulaire atteint80% - 90%, c'est - à - dire la culture de passage.
a)、 Pour les cellules adhérentes, le passage peut se référer aux méthodes suivantes:
1. Jeter le surnageant de culture et laver les cellules 1 - 2 fois avec du PBS sans ions calcium et magnésium.
Ajouter 1 - 2 ml de digestat (0,25% Trypsin - 0,53 mm EDTA) dans un flacon de culture, placer à 37 ℃ incubateur pour digérer pendant 1 - 2 min, puis observer la digestion des cellules sous un microscope, si la plupart des cellules deviennent rondes et tombent, rapidement revenir à la table d'opération, tapoter Quelques flacons de culture après avoir ajoutéPlus de 5mlContient10% de sérumLe milieu de culture termine la digestion.
3. Soufflez doucement les cellules, aspirez après la chute, centrifugez à 1000 RPM pendant 8 - 10 minutes, jetez le surnageant, ajoutez 1 - 2 ml de solution de culture et soufflez bien.
4. Compléter la solution de culture par 5 - 6 ml / flacon et distribuer la suspension cellulaire dans un rapport de 1: 2 dans de nouvelles boîtes ou des flacons contenant 5 - 6 ml de solution de culture.
b)、 Pour les cellules en suspension, le passage peut se référer aux méthodes suivantes:
Méthode 1: les cellules sont collectées, centrifugées pendant 8 - 10 minutes à 1000 RPM, le surnageant est jeté, soufflé après l'addition supplémentaire de 1 - 2 ml de la solution de culture, la suspension cellulaire est divisée dans de nouvelles boîtes ou des bouteilles neuves contenant 8 ml de milieu dans un rapport de 1: 2 à 1: 5.
Méthode 2: la moitié de la solution peut être choisie, après avoir abandonné la moitié du milieu, les cellules restantes sont suspendues et la suspension cellulaire est divisée dans une nouvelle boîte de 8 ml de milieu ou dans un flacon dans un rapport de 1: 2 à 1: 3.
PS :Si le client reçoit2ml de cellules tubulaires, après avoir reçu les cellules, pulvériser l'ensemble du tube avec de l'alcool à 75% après la désinfection dans une table ultra - propre ou une armoire de sécurité, opération strictement stérile; Transfert des cellules tubulaires dans un flacon de culture t25 ouBoîte de pétri de 6 cm, ajouter 5 ml de milieu de culture gauche et droite pour mélanger, mettre dans l'incubateur pendant la nuit après la culture pour voir la densité cellulaire: si la densité n'est pas supérieure à 80%, le changement de liquide continue la culture, selon le cas, le passage ou la congélation. Si la densité est supérieure à 80%, le passage peut être effectué directement (ibid.).
Trois,Stockage des cellules congelées:(Remarque: pour la méthode de lyophilisation des cellules sans sérum, veuillez vous référer à notre division)
1, croissance des cellules pour couvrir le flacon de cultureÀ 80% de la surface, jeter le liquide de culture dans un flacon de culture de 25 cm 2 et laver les cellules une fois avec du PBS;
2, ajouter0,25% de digestat d'environ 1 mL dans un flacon de culture, visualiser au microscope inversé, ajouter le liquide de culture après la rétraction des cellules à arrondir pour terminer la digestion, souffler doucement les cellules pour les faire tomber, puis transférer la suspension dans un tube à centrifuger de 15 ml, centrifuger à 1000 RPM pendant 5 min;
3, resuspendre les cellules avec la bonne quantité de lyophilisat et placer dans le lyophilisateur;
4, placez d'abord le lyophilisateur cellulaire sur- 20 ℃ 1,5 H, puis le déplacer à - 80 ℃
Certaines des cellules associées sont les suivantes:
Cellules primaires pituitaires
Cellules fibroblastiques primaires de l'intestin grêle
Cellules fibroblastiques prostatiques
Cellules primaires épithéliales des voies biliaires intra - hépatiques
Cellules primaires macrophages pulmonaires
Cellules fibroblastiques hépatiques de souris
Cellules primaires gliales de souris
Fibroblastes artériels rigides de souris
Cellules primaires kératinisées de la peau de souris
Cellules primaires gliales du microthalamus de souris
Cellules primaires astrogliales de souris de type I
Cellules primaires interstitielles intestinales de souris
Cellules primaires épithéliales hépatiques de souris
Cellules primaires péripulmonaires de souris
Cellules primaires du muscle lisse de l'artère pulmonaire de souris
Cellules primaires PBMC de moelle osseuse de souris
Cellules primaires périrénales de souris
Cellules fibroblastiques membranaires rénales de souris
Cellules fibroblastiques de la muqueuse gastro - œsophagienne de souris
Cellules fibroblastiques de la muqueuse gastrique de souris
Cellules primaires endothéliales myocardiques de souris
Cellules fibroblastiques aortiques de souris
Cellules primaires épithéliales utérines de souris
Cellules primaires hypertrophiques dérivées de la moelle osseuse
Cellules primaires t tueuses naturelles
Cellules primaires t CD4 + de la rate
Cellules primaires du muscle lisse vasculaire artériel cérébral
Cellules primaires myosatellites
Cellules primaires astrogliales
Neurones de la moelle épinière
Cellules primaires endothéliales microvasculaires cérébrales
Cellules souches mésenchymateuses de la moelle osseuse
Cellules primaires endothéliales microvasculaires graisseuses
Cellules pré - adipogéniques
Kératinocytes primaires
Cellules fibroblastiques primaires de la peau
Cellules primaires du noyau médullaire
Cellules fibroblastiques musculaires squelettiques primaires
Cellules fibroblastiques synoviales primaires
Cellules primaires épithéliales de l'endomètre
Cellules primaires du muscle lisse tubaire
Cellules primaires épithéliales des trompes de Fallope
Cellules primaires interstitielles ovariennes
Cellules primaires du muscle lisse caverneux
Les testicules soutiennent les cellules primaires
Cellules primaires primaires thymiques
Cellules primaires du thymus
Cellules primaires étoilées du foie
Cellules primaires endothéliales coronaires
Cellules primaires du muscle lisse coronaire
Cellules primaires endothéliales carotidiennes
Cellules primaires du muscle lisse carotidien
Cellules primaires du muscle lisse aortique coeliaque
Cellules fibroblastiques de la membrane externe de l'aorte péritonéale
Cellules primaires endothéliales de l'artère fémorale
Cellules primaires du muscle lisse de l'artère fémorale
Cellules primaires endothéliales de l'artère pulmonaire
Cellules primaires du muscle lisse des grandes artères pulmonaires
Fibroblastes membranaires externes des grandes artères pulmonaires
Cellules primaires épithéliales trachéales
Cellules primaires du muscle lisse trachéal
Cellules primaires épithéliales bronchiques
Cellules primaires du muscle lisse bronchique
Cellules fibroblastiques pulmonaires primaires
Cellules primaires d'épiderme de lèvre de poisson de scavenger
Cellules primaires épithéliales mammaires porcines
Cellules primaires endothéliales microvasculaires du poumon ovin
Cellules primaires endothéliales de l'artère pulmonaire ovine
Cellules primaires du muscle lisse de l'artère pulmonaire ovine
Fibrogenèse pulmonaire ovine fine primaire