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8ème étage, bâtiment 2, Parc des sciences et technologies de l'est de la Chine, 1038 Jinsha jiang road, district de Putuo, Shanghai
Shanghai zequan Technology Co., Ltd
8ème étage, bâtiment 2, Parc des sciences et technologies de l'est de la Chine, 1038 Jinsha jiang road, district de Putuo, Shanghai
Système de détermination respiratoire microplaque série


Étude des organismes minuscules
Si vous étudiez le taux de consommation d'oxygène d'ovules / embryons / larves de poissons ou d'invertébrés, d'organismes microscopiques tels que les copépodes ou les daphnies, envisagez un système de mesure respiratoire à microplaques fermé à 24 puits.
Système de détermination respiratoire microplaque
Système de microplaques
(Chapitre Central24通道/ 80Microlitres, extensible) et

Aperçu
Le système de mesure respiratoire microplaque pour petits animaux est un appareil de détection respiratoire et métabolique automatisé à haut débit spécialement conçu pour les micro - organismes microscopiques et les micro - organismes. Il utilise une technologie de détection d'oxygène fluorescente non invasive pour surveiller en temps réel la consommation d'oxygène / le taux de production d'un échantillon à l'intérieur de micropores scellés et capturer avec précision un signal respiratoire faible.
Facile à utiliser et à haut débit, ce système de test respiratoire à microplaques permet de déterminer la vitesse respiratoire individuelle des micro - organismes aquatiques, terrestres et microbiens sur une large plage de température (5 - 40 ° c). Le système complet, une fois monté dans la boîte de transport rigide standard, est facile à transporter et peut être livré à des postes de travail éloignés sur le terrain, etc. Le système prend en charge la détection Multi - environnement de l'eau, de l'air et du gaz, la base 24 canaux peut être étendue à 240 canaux, largement utilisée dans la biologie aquatique, la microbiologie, la toxicologie environnementale, la physiologie végétale et d'autres domaines de recherche.
Objet de l'étude
Objets adaptés aux études métaboliques à micro - échellePour:
• Organismes aquatiques microscopiques: embryons / juvéniles de poisson zèbre / courge verte, œufs et têtards de Xenopus africains, daphnies, copépodes, etc.
• Organismes terrestres microscopiques: moustiques / tiques, araignées, chrysalides arthropodes, drosophiles telles que la mouche à ventre noir, larves de chironomes terrestres, etc.
• Microorganismes / unicellulaires: bactéries, algues, levures, protozoaires, suspension cellulaire
• Échantillons de plantes: semences de plantes de toutes sortes (Arabidopsis / riz / blé / maïs), tissus végétaux isolés
• Autres: tissus / organes animaux isolés, oocystes
Le taux de consommation d'oxygène (ou de production d'oxygène) de presque tous les organismes vivants peut être déterminé par ce système tant qu'il peut être placé à l'intérieur des pores d'une microplaque en verre.

Caractéristiques du produit
ü Essais non destructifs non invasifs:Capteur d'oxygène Fluorescent optique, sans contact avec l'échantillon, peut être surveillé en continu pendant une longue période sans perturber l'activité biologique.
ü Expansion flexible à haut débit:Modèle de base avec microplaque en verre de 24 trous, un seul ordinateur peut étendre la connexion jusqu'à 10 lecteurs de plaque de 24 trous pour réaliser une détection à haut débit; Plusieurs volumes de pores disponibles en option: 80, 200, 500, 940 et 1700 μl
ü Mesure stable de haute précision:La détection en temps réel de la teneur en oxygène dissous à l'intérieur de chaque puits étanche à l'air (respirométrie de type fermé) permet de déterminer le taux de consommation ou de production d'oxygène en phase aqueuse ou gazeuse, le temps de réponse du capteur < 30 s et la quantité de dérive < 1% de saturation de l'air / semaine, capturant avec précision les signaux métaboliques faibles.
ü Automatisation de l'ensemble des opérations du processus:Microresp adapté aux systèmes Windows 11 ™ Logiciel dédié, facile à utiliser, prend en charge l'enregistrement des données, les statistiques et l'analyse
ü Adaptation environnementale Multi - scènes:Design compact, peut être placé dans l'incubateur / bain d'eau ou utilisé sur la table de Shaker, prend en charge le contrôle de la température de 5 à 45 ℃, l'ensemble complet peut être transporté portable sur le site de terrain.
ü Faible coût des consommables:Le capteur optique d'oxygène soluble est réutilisable et peut être testé après plusieurs étalonnages; Les microplaques en verre borosilicium sont réutilisables.
Composition du système
n Hardware de base
· 24 Lecteur de microplaques de canal (avec shunt, adaptateur secteur)
· MicroResp™ V1Logiciel (avec cryptage autorisé)
Élément de paramètre |
Spécifications |
Système d'adaptation |
Windows 11, 64 bits (double noyauProcesseur 2GHzEt,≥8 GoMémoire,2unUSBLes ports,≥ 1280 × 1024Résolution) |
Taux d'échantillonnage |
3–300sRéglable |
Fonctions de base |
Compensation respiratoire de fond, normalisation des données sur l'oxygène, distribution des groupes de traitement,MO₂Calcul automatique, analyse de données |
Mode de fonctionnement |
Mode entièrement fonctionnel (déverrouillage cryptographique), mode démo (sans analyse matérielle des données) |
Exportation de données |
ExcelFormat, avec horodatage données oxygène, taux métabolique, résultats statistiques et graphiques |
· Microplaque en verre borosilicaté 24 trous (Multi - spécifications en option)

Le système de microplaques de base est livré en standard avec une microplaque en verre borosilicium, fournissant les cinq spécifications suivantes de microplaques peuvent être compatibles avec le même lecteur que le système standard, il suffit d'un système de microplaques pour remplacer les microplaques de différents volumes de pores, ce qui facilite l'étude de différents types de corps, différentes espèces d'organismes.
Les paramètres de diamètre intérieur et de profondeur de chaque spécification sont indiqués dans le tableau ci - dessousPour:
|
volume (μL) et |
Diamètre intérieur (mm) et |
profondeur (mm) et |
Dimensions de la plaque entière (longueur × largeur × hauteur) (mm) et |
80 |
4.5 |
5.0 |
120×80×7 |
200 |
6.0 |
7.0 |
120×80×9 |
500 |
8.0 |
10.0 |
120×80×12 |
940 |
10.0 |
12.0 |
120×80×14 |
1700 |
12.0 |
15.0 |
120×80×17 |
n Joints et accessoires auxiliaires
· Guide microplaque (contrepoint précis)
· Tapis en silicone, bloc de compression (pour réaliser une étanchéité à l'air)
· Film d'étanchéité auto - adhésif étanche à l'air, rouleau de film d'étanchéité (joint auxiliaire)
n Protection portable
· Boîte de transport rigide (rangement complet et transport portable)
Obtenir des données sur l'oxygène en temps réel
· Par microresp ™ Système de mesure respiratoire à microplaques qui calcule et analyse en temps réel le taux métabolique des daphnies, des mouches des fruits, des moustiques, des poissons zèbres et d'autres organismes modèles ou microscopiques. MicroResp ™ Responsable de la collecte des données d'oxygène du lecteur de microplaques et du calcul automatique des données MO2 / VO2 pour chaque trou de la plaque de verre.
La teneur réelle en oxygène de chaque trou est affichée en vue numérique ou présentée sous forme indépendante dans un diagramme de données personnalisable
· Pour une vue d'ensemble plus complète, toutes les pistes de données peuvent être surveillées dans un diagramme combiné en temps réel et les traitements appliqués peuvent être notés. Les diagrammes de données de chaque expérience peuvent être rapidement exportés sous forme d'images ou de fichiers Excel pour une présentation facile des résultats avant l'analyse des données
· MicroResp ™ La consommation d'oxygène dans chaque puits peut être surveillée non seulement, mais également la production d'oxygène. Basculez le mode de mesure dans l'eau (y compris l'eau douce et l'eau salée) et dans l'air, facile à utiliser comme un interrupteur à bascule.
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Paramètres techniques
Caractéristiques fonctionnelles |
Spécifications paramètre |
Capteur d'oxygène compatible |
Sonde de capteur réutilisable |
Canal de mesure de l'oxygène |
24 通道 |
Alimentation électrique |
100 à 240 V AC |
Adaptateur secteur |
Entrez:100 - 240 V AC / sortie: 18 - 24 V DC |
Unité de concentration en oxygène |
Pourcentage de saturation en oxygène, pourcentage de saturation en air,kPa, Torr, mg/L, mmol, ml/L |
Gamme de mesure |
0 à 50% de saturation en oxygène 0 - 235% de saturation de l'air 0 à 50 kPa 0 - 235 Torr 0–22.5 mg/L 0 à 700 μmol 0 à 22,5 ml/L |
Résolution |
à 20,9% o₂: ± 0,4% o₂ Dans207 hPa 时: ± 4 hPa Dans283,1 μmol 时: ± 5 μmol DansÀ 100% de saturation d'air: ± 2% de saturation d'air |
Intervalle d'échantillonnage |
< 5S à 60s |
Précision |
à 20,9% o₂: ± 1% o₂ DansÀ 100% de saturation d'air: ± 5% de saturation d'air |
Dérive à 0% d'oxygène (intervalle d'échantillonnage de 10 minutes) |
En une semaine: < 0,2% o₂ Dans une semaine:< 1% saturation de l'air |
Plage de température de mesure |
5–45 ℃ |
Temps de réponse (T90, Temps pour atteindre 90% de la lecture) |
< 30 secondes |
Compatibilité |
Solution aqueuse, éthanol, méthanol |
Processus de nettoyage |
Éthanol/ solutions contenant du chlore |
Domaines d'application
1. Physiologie végétale: détection du métabolisme respiratoire de la germination des graines, étude de la réponse des plantes au stress
2. Biologie aquatique: détection de la consommation d'oxygène chez les organismes aquatiques, étude des lois métaboliques du développement embryonnaire
3. Microbiologie: détection de l'activité respiratoire microbienne, évaluation des effets des inhibiteurs métaboliques
4. Toxicologie environnementale: effets des polluants sur le métabolisme biologique, biodétection de la qualité de l'eau
5. Dépistage des médicaments: dépistage des effets métaboliques des médicaments à haut débit sur les organismes microscopiques
6. Études écologiques: détection du biométabolisme sur le terrain, étude des mécanismes d'adaptation des organismes polaires
Opération expérimentale facile
n Placer un ou plusieurs organismes expérimentaux à l'intérieur de chaque Pore de verre étanche à l'air de 80 à 1700 microlitres, qui peut généralement être manipulé à l'aide d'une pipette, d'un racleur ou d'une pipette (lors de la manipulation d'arthropodes susceptibles de s'échapper);
n Les trous sont scellés à l'aide d'un film d'étanchéité en polyester imperméable à l'air, transparent et auto - adhésif collé sur la surface de la microplaque de verre.Le matériau en verre est imperméable à l'airEt la microplaque en plastique ordinaire deviendra un « réservoir» ou une « source de libération» d'oxygène en fonction de la pression partielle d'oxygène de l'échantillon, ce qui affecte les résultats de la détection;
n La microplaque de verre scellée est placée sur le lecteur à l'aide d'un guide de positionnement permettant d'aligner précisément les 24 points de détection d'oxygène dissous avec les 24 sources lumineuses LED bleues et les récepteurs de lumière du lecteur. Le lecteur, le Guide de positionnement et la microplaque peuvent être facilement placés dans l'incubateur ou directement dans la Chambre thermostatique pour réaliser le contrôle de la température de la microplaque en verre.
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FacultatifProgramme de contrôle de la température
n En option avec un bain d'eau à circulation acrylique pour réaliser le contrôle de la température, placez le bain d'eau sur le lecteur, placez la microplaque en verre scellée dans le bain d'eau. Une seule microplaque en verre est fixée en place pour concentrer les 24 points de capteur d'oxygène directement sur les 24 sources lumineuses LED pour une intensité de signal optimale. Le port de bain d'eau est utilisé pour le passage d'un flux d'eau congelé / chauffé sur une microplaque en verre immergé, c'est - à - dire que le taux de respiration aquatique peut être mesuré à n'importe quelle température ambiante ou utilisé lors de l'étalonnage.

n Sonde de température de remplacement pour les instruments witrox 1 et witrox 4 avec câble blindé de 5 m de long. Le capteur Pt 1000 a une tolérance de 1 / 3 de celle du capteur de classe B et une haute précision de + / 0,15 °C.
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Traitement de stratification anti - oxygène soluble
Pour les organismes non moteurs en phase aqueuse (p. ex. embryons, hydres, anémones de mer ou micro - organismes), on peut utiliser un agitateur orbital qui réduit le risque de délamination de l'oxygène lytique dans les pores.
Nettoyage des capteurs et microplaques
Chaque trou de détection est équipé d'un point de détection d'oxygène soluble réutilisable non invasif qui utilise une méthode dynamique d'extinction par fluorescence pour détecter l'oxygène soluble. Après l'expérience, les microplaques peuvent être rapidement nettoyées avec de l'eau savonneuse douce et de l'eau désionisée, et elles peuvent également être stérilisées à l'éthanol ou à l'eau de javel douce, ce qui facilite leur réutilisation pour des expériences ultérieures.

Design compact, transport facile
Ce système prend très peu d'espace de laboratoire lorsqu'il est utilisé, ne nécessite qu'une prise de courant murale pour l'alimentation électrique et passe parUSBL'interface est connectée au PC système Windows. Le système complet peut être transporté en toute sécurité dans tous les types de sites, y compris les régions éloignées, une fois qu'il est monté dans une boîte de transport rigide standard.

Référence de cas d'application
L'équipe de recherche transporte ce système de microplaques au pôle Sud pour étudier les caractéristiques métaboliques des larves de chironomes terrestres
Pour mieux comprendre comment les insectes s’adaptentEnvironnemental, une équipe de chercheurs a étudié les moucherons antarctiques. L'équipe, dirigée par Nicholas Teets (professeur agrégé, Université du Kentucky), comprenait Jack Devlin (étudiant au doctorat, Université du Kentucky), cleverson de Sousa Lima (étudiant au doctorat, Université du Kentucky), Yuta kawarasaki (professeur agrégé, Gustavus adolophus College), JD Gantz (professeur adjoint, Hendrix College) et vitror pavinato (chercheur postdoctoral, Université du Kentucky). Des chercheurs de l'Ohio State University étudient la paire d'insectesLes mécanismes des processus moléculaires et physiologiques qui sous - tendent la tolérance au stress et comment il peut survivre dans des conditions antarctiques difficiles. Dans le cadre de l'étude, l'équipe a récemment terminé une saison d'excursions sur le terrain dans la péninsule Antarctique, où ils ont recueilli des insectes terrestres de diverses îles et mené des expériences physiologiques à bord de navires de recherche et de stations de recherche. L'un des principaux intérêts de l'équipe de recherche est la façon dont ces insectes répondent aux défis énergétiques posés par le stress.
Cleverson Lima utilise microresp ™ Système de mesure respiratoire microplaque pour logiciel. Les plaques de verre microplaqué sont placées à l'intérieur du bain - Marie acrylique (près de la main gauche de cleverson) et le bain de recirculation fournit un débit d'eau de 10 ° C à travers le bain - Marie, en maintenant la température stable.
Utilisation de Loligo ® Le système de mesure respiratoire à microplaques de Systems, où l'équipe a pu mesurer la consommation d'oxygène en temps réel d'une seule larve d'Anaconda sous diverses pressions environnementales, est une donnée que l'équipe n'a pas pu obtenir dans le cadre de projets antérieurs. Leur nouvel outil, le système de mesure respiratoire à microplaques, permet ainsi aux chercheurs de mesurer le taux métabolique en temps réel, fournissant des données clés sur la façon dont les insectes sont affectés par différents facteurs de stress.
MicroResp ™ v1.1, Le système de microplaques est livré avec son propre logiciel qui prend en charge les calculs MO2 en temps réel et horodatés pour la mesure de l'air / gaz ainsi que de l'eau.
Jack Devlin, membre de l'équipe, s'intéresse aux effets potentiels de la pollution microplastique sur l'Antarctique. Il a également utilisé un système de mesure respiratoire à microplaques pour déterminer si l'exposition aux microplastiques peut provoquer des changements dans le taux métabolique. Ces résultats sont essentiels pour comprendre l’impact potentiel de la pollution microplastique sur les écosystèmes fragiles du continent.

MicroResp ™ Exemples de données les diagrammes de données MO2 et Oxygen & Time, créés par Jack Devlin, ont été utilisés pour chaque trou de plaque de verre contenant des larves de moucherons terrestres antarctiques. Le noir est blanc, le gris est le témoin et le bleu est l'insecte exposé à des concentrations élevées de microplastiques. Maintenir le niveau d'humidité en ajoutant une feuille de papier filtre humide dans chaque puits.
L'équipe a également comparé la tolérance et le génome du ver belge de l'Antarctique à plusieurs parents proches pour identifier les mécanismes clés par lesquels cet insecte prospère en Antarctique. Cette étude permet de mieux comprendre comment les insectes s'adaptent à leur environnement et fournit des informations sur la capacité d'adaptation des espèces face à un environnement en constante évolution.
Articles évalués par des pairs publiés avec ce système
Ce qui suit est une partie des articles publiés citant ce système de test respiratoire microplaque:
1. Effets de la température sur le taux métabolique lors de la métamorphose chez l'abeille à feuilles de luzerneEffet de la température sur le taux métabolique au stade de développement de l'abeille à feuilles coupées de luzerne
Kayla N. Earls, Jacob B. Campbell, Joseph P. Rinehart, Kendra J. Greenlee (2023)Biologie ouverteLien vers l'article
2. Effets de l'augmentation du CO2 sur le taux métabolique et la manipulation des déchets azotés au début de la vie du thon à ailettes jaunes (Thunnus albacares) Effet de concentrations élevées de dioxyde de carbone sur le taux métabolique et le métabolisme des déchets azotés au début du cycle de vie du thon albacore
Rachael M. Heuer, Yadong Wang, Christina Pasparakis, Wenlong Zhang, Vernon Scholey, Daniel Margulies, Martin Grosell (2023),Biochimie comparative et physiologie Partie A: Physiologie moléculaire et intégrativeLien vers l'article
3. La manipulation chimique de la fonction mitochondriale affecte le métabolisme des caroténoïdes rouges chez un copépode marin (Tigriopus californicus) Effets de la régulation chimique de la fonction mitochondriale sur le métabolisme des caroténoïdes rouges chez les copépodes marins (Daphnia tigra California)
Matthew J. Powers, James A. Baty, Alexis M. Dinga, James H. Mao, Geoffrey E. Hill (2022),Journal de biologie expérimentale.Lien vers l'article
4. Les réponses métaboliques au pétrole brut au début de la vie révèlent des fenêtres critiques de développement chez le poisson zébra (Danio rerio) La réponse métabolique à l'exposition au pétrole brut révèle une fenêtre critique sur le développement précoce du poisson zèbre
Karem N. Vazquez Roman, Warren W. Burggren (2022), Biochimie comparative et physiologie Partie C: Toxicologie et pharmacologie.Lien vers l'article
5. Effets de l'exposition aux résidus des mines marines sur le développement, la croissance et l'accumulation de lipides chez Calanus finmarchicusEffets de l'exposition aux scories marines sur le développement, la croissance et l'accumulation de lipides de Daphnia Arctic
Linn H. Svendheim, Tjalling Jager, Pål A. Olsvik, Ida Beathe Øverjordet, Tomasz M. Ciesielski, Trond Nordtug, Torstein Kristensen, Bjørn Henrik Hansen, Bjarne Kvæstad, Dag Altin, Julia Farkas (2021), Chimosphère.Lien vers l'article
6. La fraction hydrosoluble du pétrole brut affecte la variabilité et a des effets transgénérationnels chez Daphnia magnaEffets de la variabilité et des effets transgénérationnels des composants hydrosolubles du pétrole brut sur le macroporium
Mikko Nikinmaa, Emilie Suominen, Katja Anttila (2019), Toxicologie aquatique.
Lien vers l'article
7. Variation génétique du taux métabolique et corrélations avec d'autres composantes du budget énergétique et histoire de vie chez Daphnia magnaVariation génétique du taux métabolique macrogyulien et sa corrélation avec d'autres composantes du bilan énergétique et les caractéristiques du cycle de vie
Sigurd Einum, Erlend I. F. Fossen, Victor Parry et Christophe Pélabon (2019), Biologie évolutive.Lien vers l'article
8. Évaluation écotoxicologique des eaux usées traitées par le nouveau procédé solaire chlor-photo-Fenton pour l'irrigation durable des culturesNouveau chlore solaire-Évaluation écotoxicologique des eaux usées traitées par le procédé photofenton pour une irrigation agricole durable
Belachqer-El Attar, S.; Taborelli, P.; Soriano-Molina, P; Roslev, P; Pérez, JA Sánchez (2026), Journal of Environmental Management.
Système de détermination respiratoire microplaque série
Origine: Loligo, Danemark